Морфологическая диагностика. Подготовка материала для гистологического исследования и электронной микроскопии - страница 6



При необходимости использования нейтрального раствора формалина (для фиксации нервной ткани, при применении специальных окрасок, при проведении иммуноцитохимического исследования) его готовят следующим образом: раствор формальдегида (37 – 40 %) – 100 мл, вода дистиллированная – 900 мл, однозамещенный фосфат натрия – 4 г, безводный двузамещенный фосфат натрия – 6,5 г. Этот раствор стабилен при комнатной температуре в течение нескольких месяцев. Использование нейтрального формалина позволяет существенно уменьшить вероятность отложения формалиновых осадков, появление которых обусловлено взаимодействием гемоглобина с кислыми растворами формалина (Коржевский Д. Э. [и др.], 2010).

Нейтрализация формалина по Б. Ромейсу. Формалин оставляют надолго в коричневой склянке над слоем порошкообразного углекислого кальция толщиной 1 – 2 см. Вначале склянку несколько раз энергично взбалтывают. Обычно кислота достаточно нейтрализуется уже через 24 ч.

Если нейтрализация формалина не производится, то его следует развести до нужной концентрации заранее, а не в день фиксации. Этот прием улучшает качество фиксации.

Кусочки органов толщиной 0,5 – 1,0 см фиксируются в 10 – 20 %-м растворе формалина в течение 24 – 48 ч. Спустя сутки раствор меняют. Более длительная фиксация нежелательна. Критерием достаточной фиксации служит равномерное уплотнение объекта как с поверхности, так и выявляемое на контрольном разрезе. В центральной части не полностью фиксированных кусочков ткань сохраняет красно-розовый цвет. Фиксацию в формалине проводят при комнатной температуре (Коржевский Д. Э. [и др.], 2010).

Формалин-пиридин. Рекомендуется следующий раствор: дистиллированная вода – 75 мл, формалин – 25 мл, чистый пиридин – 5 мл. Количество фиксирующей жидкости должно превышать объем препарата по крайней мере в 20 раз. Продолжительность фиксации – 48 ч. Периферические нервы лучше фиксировать 2 нед. (допустимо и 6 нед.), не должно быть никаких осадков формалина. После этой фиксации применимы все обычные методы окраски и импрегнации. Этот метод фиксации рекомендован для тех случаев, когда предписывается нейтральный формалин. рН формалин-пиридина – около 7,0 – 7,5 (Ромейс Б., 1954).

Формалиновые осадки. Очень часто в фиксированных формалином препаратах появляются темно-коричневые кристаллические осадки, которые образуются в результате взаимодействия формальдегида с гемоглобином (Ромейс Б., 1954). Чаще всего они обнаруживаются в области кровоизлияний и над просветами кровеносных сосудов, заполненных эритроцитами. По цвету формалиновые осадки невозможно отличить от скоплений гемосидерина, что затрудняет диагностическую оценку препарата.

Метод Кардазевича. Удаление осадков лучше всего производится путем помещения неокрашенных срезов в 1 – 5 % раствор нашатырного спирта (NН>4ОН) в 70 %-м этиловом спирте. Время исчезновения осадков варьирует от 5 мин до 4 ч. Cтруктура и окрашиваемость объекта остаются неизмененными. Этот метод превосходит часто употребляющийся метод Верокая. Единственный недостаток этого способа состоит в том, что, кроме формалинового осадка, растворяется и малярийный пигмент. Остальные пигменты, прежде всего липофусцин, меланин, гемосидерин, антракотический пигмент, не растворяются (Ромейс Б., 1954).

Метод Верокая. Для освобождения от формалиновых осадков срезы помещают на 10 мин в смесь 1 части 1 %-го водного раствора едкого калия и 100 частей 80 %-го спирта, затем на 5 мин – в дважды сменяемую воду, на 5 мин – в 80 %-й спирт, после чего промывают в проточной воде (Ромейс Б., 1954).